通過將熒光技術引入Western Blotting這一檢測平臺，實現(xiàn)了在同一張膜上同時使用多個探針，這樣就有機會準確量化和比較每個相關條帶的所有信號。如果某種凝集素與蛋白質條帶結合（共定位），則可精確檢測出蛋白質的糖基化狀態(tài)。第14篇參考文獻中的一張圖表則是一個利用熒光技術鑒別 IgG Fc 片段與 Fab 片段糖基化狀態(tài)的很好例子，下面的實驗流程簡要介紹了這種方法。

 精選文獻 

• Whole sample protein glycosylation analysis (Ref. 47)

• Determine glycosylation of specific protein(s) (Ref. 30)

• Track glycosylation changes across physiological events (Ref. 28)

 實驗流程概覽 

樣本制備

• 按照實驗室常規(guī)Western Blotting流程制備樣本；

• 電泳、轉膜（建議使用PVDF膜，可以減少背景）。

封閉

• 使用Vectorlabs的CFB溶液(Carbo-Free™ Blocking,SP-5040-125),室溫孵育膜30-60分鐘?；?℃過夜孵育。

檢測

• 加入熒光標記的凝集素(根據(jù)需求，亦可選擇使用生物素標記的凝集素),室溫孵育一小時或者4℃過夜孵育；建議凝集素的初始工作濃度為0.5–10ug/ml。具體凝集素的孵育條件和使用濃度需要用戶進行優(yōu)化；

• TBST室溫洗膜 5–10 分鐘，4次；

• 加入其他感興趣的熒光標記的試劑（一抗或其他凝集素）室溫孵育一小時，或4℃過夜孵育。

顯色

• 如果使用了生物素標記的凝集素，此步驟需要加入熒光標記的鏈霉親和素或親和素孵育1小時；

• TBST室溫搖動洗膜 5–10 分鐘，2次。

信號收集

• 將膜進行干燥處理；

• 圖像采集。

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